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Presello,
Daniel - Grupo
Mejoramiento - Maíz - 2009
Autores
Presello, D.
; Iglesias, J. ;Fernández, M.; Fauguel, C; Guillermo Eyhérabide,G.; y
Lorea, R.
Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria; Estación Experimental
Agropecuaria Pergamino; CC31 Pergamino 2700; Buenos Aires; Argentina
Tabla de contenido
[Versión
Pdf]
[Introducción ][Materiales
genéticos
y métodos][Resultados][Consideraciones
finales][Tablas]
Introducción
Una de las prácticas de manejo que puede reducir la
contaminación con micotoxinas en grano de maíz es el uso de cultivares
resistentes. El Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria financia un
proyecto que tiene entre sus objetivos identificar cultivares resistentes
a las especies fúngicas toxicogénicas prevalentes. Debido al permanente
registro de nuevos materiales, la evaluación es un proceso continuo con el
objeto de mantener la información actualizada. Este sitio recibirá
modificaciones anuales con el agregado de información a fin de mantener
actualizada una base de datos sobre resistencia a hongos toxicogénicos en
el grupo de cultivares disponibles para la región maicera templada. La
misma es de uso público y puede ser citada mencionando esta fuente.
Importancia del problema
El cultivo de maíz es afectado por patógenos fúngicos
que causan podredumbres de grano y espiga, Entre los más frecuentes,
Fusarium verticillioides, F. graminearum y Aspergillus flavus son
importantes porque contaminan el grano con micotoxinas. El consumo de
alimentos contaminados con estas toxinas causa enfermedades en humanos y
animales que pueden llegar a ser fatales. En las industrias de producción
de carnes, huevos o leche, en las que el maíz es una parte de la dieta,
ocurren en forma frecuente epidemias de estas enfermedades que, aunque
pueden ser sintomáticamente poco visibles, afectan la productividad o la
reproducción de los animales. Las micotoxinas más frecuentemente
encontradas en maíz son las fumonisinas, producidas por F. verticillioides
y otros hongos de la sección Liseola (Iglesias
et al., 2005); deoxinivalenol y zearalenona, producidas por F. graminearum y
aflatoxinas producidas por A. flavus. Una forma de prevenir la
contaminación, es el uso de cultivares menos susceptibles a estos
patógenos. Este trabajo se realizó con el objetivo de obtener información
sobre la resistencia de cultivares modernos de maíz a hongos toxicogénicos.
[arriba]
Materiales genéticos y métodos
Ensayos inoculados a campo: Los cultivares fueron
sembrados en un diseño de bloques completos aleatorizados en un arreglo
factorial (cultivar x patógeno) con unidades experimentales de 50 plantas
a una densidad de 72.000 plantas por m². La inoculación se realizó
con suspensiones conidiales de F. verticillioides (aislamiento P364), F. graminearum (VI-II-3, gentileza UNLP) y
A. flavus (RCM89, gentileza UNRC).
Previo a la inoculación se probó la capacidad toxicogénica de todos los
aislamientos. Se inocularon 2 ml de una suspensión conidial a una
concentración de 1 × 106 esporas por ml mediante inyección en el canal de
los estigmas. Se evaluó la severidad de síntomas mediante una escala
visual de porcentaje de área de la espiga afectada. Se determinó la
concentración de micotoxinas en grano (fumonisinas FB1 y FB2,
deoxinivalenol, zearalenona, y aflatoxinas B1, B2, G1 y G2), mediante
cromatografía líquida de alta performance.
Ensayos inoculados en laboratorio: Dado que los
mayores problemas de contaminación con A. flavus ocurren en postcosecha,
para esta especie los híbridos fueron evaluados en una simulación de
almacenamiento en condiciones inadecuadas, mediante la técnica kernel screening assay (KSA) desarrollada en la Universidad de Nueva Orleans.
Brevemente, 24 granos de cada híbrido fueron esterilizados
superficialmente mediante inmersión en hipoclorito de sodio al 25% durante
5 minutos. Inmediatamente después, se realizo un enjuague rápido y luego
tres lavados por inmersión de 1 minuto cada uno con agua destilada
estéril. Posteriormente se inoculó con A. flavus mediante inmersión de los
granos en una suspensión de esporas a una concentración de 4 x106 conidios/ml (Fernández et al., 2009). Los granos inoculados se colocaron
en placas multipozos de acrílico en cápsulas de 3,3 ml (8x12 cm, con 24
pozos, Greiner Bio-one, Alemania) a razón de un grano por pozo, las placas
se taparon y se colocaron en una cámara húmeda con 80% de humedad Se
realizaron tres repeticiones por híbrido. Luego de siete días de
crecimiento, se evaluó el área visiblemente afectada de cada grano y se
realizó el análisis de variancia en base al promedio de cada repetición.
La elevada cantidad y tasa de recambio de los
híbridos inscriptos dificulta una evaluación en un esquema clásico en que
se analiza una matriz rectangular de g genotipos en e ambientes. A fin de
evaluar el mayor número de cultivares posible con los fondos disponibles,
cada genotipo fue evaluado por un período máximo de dos años. En todos los
experimentos se incluyó un híbrido experimental susceptible a Fusarium (L4641xL4973)
y otro susceptible a Aspergillus (L6856xL4973), ambos desarrollados por
INTA. Estos materiales fueron usados como criterio de comparación para
decidir que híbridos deberían continuar el proceso de evaluación. Todo
cultivar con medias de severidad de síntomas inferior a la de estos
testigos fue incluido en un segundo año de evaluación y se le tomaron
muestras para determinar contenidos de micotoxinas en grano. Dos de los
híbridos comerciales que mostraron mayor nivel de resistencia a
podredumbres de espiga durante los dos primeros años, también fueron
incluidos en el tercer año de ensayos y se continuarán utilizando como
testigos resistentes en evaluaciones futuras. De esta manera, se podrán
introducir a la evaluación los nuevos cultivares y realizar comparaciones
en base a estos testigos.
En 2006, se evaluaron 58 híbridos,
25 de los cuales fueron selectos para la evaluación en 2007 por haber
expresado los mayores niveles de resistencia en relación a los testigos.
En 2007, se evaluaron estos 25 híbridos junto con 26 nuevos materiales. En
2008, se evaluaron 29 híbridos, 13 de los cuales no habían sido incluidos
en evaluaciones anteriores y el resto fueron los destacados en 2007
(Tabla1).
Los mismos híbridos fueron incluidos en la red
de evaluación de cultivares conducida por la Estación Experimental
Pergamino en el norte de la provincia de Buenos Aires. Las medias de
rendimiento y de severidad de síntomas fueron expresadas en porcentajes
respecto a la media del ensayo y se elaboró un biplot a fin de comparar la
productividad y la resistencia de los genotipos.
[arriba]
Resultados
En esta comunicación se presentan los
resultados de tres años de trabajo (Tabla 1). La información sobre
severidad de síntomas está completa y los datos de concentración de micotoxinas en grano del tercer año serán agregados cuando estén
disponibles.
Ensayos inoculados a campo
Severidad de síntomas
Los rangos de severidad de síntomas en ensayos a
campo variaron desde 0.0-9.6, 5.0-59.8 y 2.6-75.8% de la espiga
afectada, para A. flavus, F. verticillioides y F. graminearum,
dependiendo del híbrido y año de evaluación (Tabla1). Estos resultados
indican que existe un marcado nivel de variabilidad para resistencia a
podredumbres de espiga en el germoplasma disponible para la producción.
La interacción genotipo x ambiente fue significativa
y se observó que mientras algunos híbridos se destacaron sólo en uno de
los dos años de evaluación, otros mantuvieron menor severidad de síntomas
en comparación a los del testigo susceptible en ambos años (Tabla2).
Las medias de severidad de síntomas promedio para
ambas Fusarium spp. mostraron una amplia dispersión en relación a las
medias de rendimiento (Figura 1). Ambas variables parecen tener una
distribución independiente con algunos híbridos expresando alta
productividad y resistencia a la enfermedad.
Concentración de micotoxinas en grano
Se observaron diferencias entre cultivares para
concentración de deoxinivalenol y zearalenona en los ensayos de 2006 y
2007 y para aflatoxinas B1 en 2006. En 2007, los niveles de severidad de
síntomas luego de la inoculación con A. flavus alcanzaron escaso nivel de
variabilidad y por lo tanto no se analizó el contenido de aflatoxinas en
grano. Las determinaciones de concentración de fumonisinas en las parcelas
inoculadas con F. verticillioides se llevaron a cabo en 2006 y 2007, pero
por problemas que aún no fueron identificados, los resultados analíticos
no están acordes, de acuerdo a experiencias previas, con los niveles de
síntomas observados y por lo tanto no son presentados. Si bien podría
existir resistencia a la acumulación de micotoxina en genotipos
susceptibles a F. verticillioides, resultados previos (Presello
et al.,
2006) de trabajos realizados sobre cultivares argentinos indican que el
nivel de severidad de síntomas es un buen indicador del contenido de fumonisinas en grano y por lo tanto es esperable que la mayoría de los
híbridos que expresaron bajo nivel de severidad de síntomas también tengan
niveles bajos de contaminación.
Las concentraciones de deoxinivalenol y zearalenona
en los híbridos evaluados en estos experimentos también estuvieron
altamente asociadas con el nivel de síntomas de F. graminearum (Figura 2).
Las concentraciones de ambas toxinas estuvieron asociadas en forma
positiva (Figura 3) y la relación deoxinivalenol/zearalenona varió de 2 a
18, dependiendo del híbrido y año de evaluación. Dado que no se detectaron
diferencias significativas entre cultivares para esta relación, es
probable que las variaciones observadas tengan un origen ambiental. Las
concentraciones de aflatoxina B1 en granos inoculados a campo con A. flavus, también estuvieron asociadas a la cantidad de síntomas aunque con
un coeficiente de determinación algo menor.
Kernel screening assay
En ambos años de ensayo, 2006 y 2007, la dispersión
entre híbridos fue relativamente baja en comparación a la observada en los
experimentos a campo (Tabla1). Se encontraron algunas diferencias entre
híbridos en la proliferación de A. flavus, pero de escasa magnitud y en la
mayoría de los casos no consistentes entre años (Tabla 1). Estudios
previos indican que los granos dañados son más susceptibles a hongos de
almacenamiento porque las alteraciones físicas, mayormente en las capas
externas, facilitan la entrada del patógeno. Los granos para estos
estudios fueron desgranados a mano a fin de no alterar su integridad
física. Una posible modificación para evaluaciones futuras es la inclusión
de un tratamiento de daño en las capas externas del grano simulando lo que
suele ocurrir durante la cosecha y procesamiento.
[arriba]
El grupo de 97 híbridos de maíz evaluado por
resistencia a hongos toxicogénicos mostró variabilidad para reacción a
Fusarium en condiciones de campo con híbridos mostrando resistencia a
ambas especies fúngicas. La variabilidad para reacción a A. flavus en
condiciones de campo fue escasa y detectable sólo en algunos años. Estos
resultados son consistentes con la mayor habilidad de Fusarium en
relación a Aspergillus para crecer con altos los contenidos de agua
libre en grano que ocurren en condiciones de campo.
Las medias de severidad de síntomas estuvieron
asociadas con la concentración de micotoxinas en grano. Estos resultados
indican que es posible reducir el contenido de micotoxinas en grano
mediante el uso de los híbridos disponibles con mayor nivel de
resistencia.
Se identificaron híbridos resistentes a algunas de
estas podredumbres de espiga y con alto nivel de productividad en la
región, indicando que la elección del cultivar en base a la resistencia
para producir grano con bajo contenido de micotoxinas no implica
sacrificar potencial de rendimiento del cultivo.
Hay que tener en consideración que estas evaluaciones
son producto de experimentos inoculados en los que la presión de las
enfermedades es mayor que los que normalmente ocurre en condiciones de
infección natural y por lo tanto es probable que algunos híbridos que en
estos ensayos se presentan como susceptibles puedan expresar bajo nivel de
síntomas en años de epifitias moderadas. También es esperable que los
híbridos que presentaron buen comportamiento con la elevada presión de
enfermedad causada por la inoculación, lo mantengan aún en los años de
epifitias severas.
[arriba]
Tabla 1: Reacción a podredumbre de espigas
y concentración de micotoxinas en híbridos de maíz inoculados a campo con
Fusarium verticillioides†, F. graminearum y Aspergillus flavus‡.
|
Híbrido |
Severidad de podredumbre de espiga |
Concentración de Micotoxinas |
|
KSA |
|
A.flavus |
F.verticilliodes |
F.graminearum |
(F.graminearum,ppb) |
(A.flavus,ppb) |
(A.flavus) |
|
|
|
|
Deoxinivalenol |
Zearalenona |
Aflatoxinas |
|
|
|
|
B1 |
B2 |
G1 |
G2 |
|
2006 |
2007 |
2006 |
2007 |
2008 |
2006 |
2007 |
2008 |
2006 |
2007 |
2006 |
2007 |
2006 |
2006 |
2007 |
2008 |
|
31B18 MG |
1.2* |
0.0* |
10.7* |
39.7 |
|
62.3 |
21.9 |
|
|
|
|
|
0.9* |
0.4 |
ND |
ND |
32.2 |
38.1 |
|
|
31F25 |
1.6* |
0.8 |
17.0* |
34.9 |
|
52.1* |
17.6* |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
41.4 |
|
|
31P77 MG |
9.6 |
|
59.8 |
|
|
55.2 |
|
|
|
|
|
|
3.4 |
0.2 |
ND |
ND |
28.8 |
|
|
|
31Y04 MG |
4.1 |
|
20.2 |
|
|
64.0 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
33Y45 RR2 |
2.3* |
|
24.6 |
|
|
52.7* |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
ACA 2000 |
1.5* |
3.1 |
9.4* |
35.1 |
|
50.5* |
7.3* |
|
25284 |
|
6172 |
|
2.2* |
0.2 |
ND |
ND |
29.3 |
30.3 |
|
|
ACA 2001 |
1.7* |
|
12.2* |
|
|
54.4* |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
ACA 2001MG |
1.9* |
|
10.9* |
|
|
59.0 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
ACA 2005MG |
1.2* |
|
10.2* |
|
|
56.8 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
ACA 2006 |
0.6* |
0.6 |
18.0* |
27.4 |
|
43.1* |
19.6 |
|
34241 |
|
2156 |
|
3.7 |
0.8 |
ND |
ND |
29.0 |
43.1 |
|
|
AM8323 |
9.4 |
|
40.2 |
|
|
75.8 |
|
|
|
|
|
|
9.3 |
0.8 |
ND |
ND |
28.1 |
|
|
|
AM8330 MG |
1.9* |
1.1 |
9.7* |
20.2* |
|
34.9* |
7.0* |
|
14780 |
3542 |
2083 |
828 |
1.3* |
0.2 |
ND |
ND |
|
29.6 |
|
|
AW190 MG |
1.9* |
0.0* |
12.7* |
40.8 |
|
19.3* |
13.7* |
|
14069 |
|
1355 |
|
2.9 |
0.2 |
ND |
ND |
26.1 |
30.5 |
|
|
AX744 MG |
1.0* |
|
17.4* |
|
|
51.0* |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
AX842 |
0.8* |
|
14.6* |
|
|
65.7 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
AX842 TDMAX |
0.5* |
|
13.7* |
|
|
68.1 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
AX882 CLMG |
3.0 |
1.5 |
12.0* |
32.2 |
|
21.1* |
9.5* |
|
6108* |
|
709* |
|
1.7* |
0.5 |
ND |
ND |
39.9 |
33.6 |
|
|
AX892 MG |
1.4* |
0.3 |
8.4* |
15.0* |
|
28.6* |
13.8* |
|
13892 |
2194 |
2659 |
429 |
2.1* |
0.4 |
ND |
ND |
29.4 |
29.6 |
|
|
AX895 |
0.7* |
|
13.5* |
|
|
58.6 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
AX895 TDMAX |
1.2* |
|
15.3* |
|
|
64.4 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Cedric CL |
1.9* |
|
15.6* |
|
|
30.1* |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Cedric MG |
1.3* |
|
10.4* |
|
|
35.9* |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Centinela |
0.6* |
|
12.4* |
|
|
44.4* |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Cóndor |
3.4 |
|
12.4* |
|
|
41.9* |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
DK670MG |
0.5* |
0.6 |
11.3* |
31.9 |
|
19.6* |
9.4* |
|
11075* |
|
1195 |
|
4.4 |
0.4 |
ND |
ND |
26.5 |
30.1 |
|
|
DK684 RR2 |
1.0* |
0.2 |
9.7* |
38.9 |
|
22.5* |
15.8* |
|
12559* |
|
693* |
|
2.8* |
0.6 |
ND |
ND |
25.5 |
30.3 |
|
|
DK700 MG |
0.9* |
|
13.8* |
|
|
26.5* |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
DK747 MG |
1.1* |
0.3 |
16.0* |
38.3 |
|
18.9* |
18.6 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
30.4 |
|
|
Don Luna |
1.6* |
1.0 |
17.3* |
42.3 |
|
27.9* |
13.9* |
|
9121* |
|
1494 |
|
0.9* |
0.2 |
ND |
ND |
|
31.9 |
|
|
FR 098 |
1.2* |
|
20.1 |
|
|
38.7* |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
27.9 |
|
|
|
H2740 MG |
1.9* |
0.6 |
5.8* |
31.9 |
|
26.7* |
8.9* |
|
11555* |
|
814 |
|
1.3* |
0.2 |
ND |
ND |
33.9 |
29.2 |
|
|
H2765 |
5.5 |
|
24.5 |
|
|
49.7* |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Imperio Plus |
4.9 |
|
20.1 |
|
|
41.7* |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
LT620 MG |
1.6* |
0.5 |
10.8* |
30.1 |
3.2* |
20.5* |
3.9* |
17.5* |
8345* |
3760 |
469* |
580 |
3.0 |
0.4 |
ND |
ND |
29.4 |
31.6 |
33.1 |
|
LT622 MG |
0.6* |
2.6 |
8.8* |
9.8* |
4.2* |
9.3* |
3.6* |
7.1* |
5186* |
3385 |
291* |
654 |
1.0* |
0.2 |
ND |
ND |
27.2 |
38.8 |
39.9 |
|
Marzo Rojo BT |
1.0* |
2.1 |
6.6* |
30.1 |
|
34.2* |
31.2 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
45.8 |
|
|
Mass 477 HX |
5.2 |
|
27.2 |
|
|
66.7 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Mass 484 MG |
4.0 |
|
17.6* |
|
|
61.6 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Mass 494 MG |
1.0* |
2.0 |
11.2* |
23.0 |
|
26.7* |
6.0* |
|
13063 |
1255 |
1048 |
392 |
2.5* |
0.2 |
ND |
ND |
31.8 |
38.7 |
|
|
Mass 534 MG |
2.2* |
|
8.0* |
|
|
38.8* |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Mill 522 |
1.1* |
2.1 |
9.8* |
16.6* |
|
31.6* |
24.0 |
|
11080* |
|
1120 |
|
0.9* |
0.2 |
ND |
ND |
30.5 |
38.4 |
|
|
NK 940 |
1.4* |
0.7 |
15.9* |
34.4 |
|
49.5* |
7.7* |
|
21299 |
|
2412 |
|
1.2* |
0.4 |
ND |
ND |
30.5 |
28.5 |
|
|
NK780 TDMAX |
1.3* |
|
19.9 |
|
|
54.8 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
NK880 TDMAX |
6.2 |
|
16.8* |
|
|
67.3 |
|
|
|
|
|
|
4.4 |
0.4 |
ND |
ND |
26.1 |
|
|
|
NK900TDMAX |
4.5 |
3.4 |
14.0* |
33.9 |
|
45.9* |
28.1 |
|
16975 |
|
2924 |
|
0.6* |
0.5 |
ND |
ND |
30.4 |
31.6 |
|
|
Olympus Plus |
3.0 |
|
17.9* |
|
|
51.4* |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
PAN6046 |
1.9* |
1.6 |
17.9* |
23.0 |
|
47.8* |
12.9* |
|
23955 |
|
2929 |
|
3.0 |
0.4 |
ND |
ND |
|
34.5 |
|
|
PRIMUS MG |
0.6* |
0.8 |
5.0* |
16.7* |
|
33.3* |
8.3* |
|
17309 |
|
3046 |
|
2.8* |
0.2 |
ND |
ND |
27.9 |
31.8 |
|
|
RT 2O5 |
1.4* |
0.4 |
9.6* |
33.2 |
|
24.6* |
11.5* |
|
11805* |
|
940 |
|
5.3 |
0.6 |
ND |
ND |
27.6 |
42.5 |
|
|
Siroco TDMAX |
3.4 |
|
28.0 |
|
|
59.4 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
SPS 2603 MG |
0.8* |
|
8.3* |
|
|
47.5* |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
SPS 2720 MG |
0.9* |
|
10.1* |
|
|
55.2 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
SPS 2722 |
0.8* |
|
20.4 |
|
|
71.5 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
SPS 2790 |
0.5* |
4.6 |
16.4* |
25.9 |
|
14.0* |
11.8* |
|
7756* |
|
1621 |
|
1.5* |
0.2 |
ND |
ND |
28.9 |
28.6 |
|
|
SRM540MG |
0.9* |
|
17.4* |
|
|
61.4 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
SRM571 MG |
3.9 |
|
16.9* |
|
|
54.2* |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
SRM573 |
0.8* |
|
17.1* |
|
|
45.3* |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
TornadoTDMAX |
5.0 |
|
25.8 |
|
|
66.8 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Trilenium 500 BT |
0.7* |
0.5 |
10.7* |
23.7 |
|
33.2* |
17.4 |
|
16698 |
|
2135 |
|
0.9* |
0.2 |
ND |
ND |
25.5 |
31.3 |
|
|
213CL |
|
0.8 |
|
25.3 |
5.1 |
|
10.4* |
22.3 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
29.4 |
32.9 |
|
ACA-417 RR2 |
|
1.3 |
|
27.2 |
4.0* |
|
6.9* |
23.7 |
|
2088 |
|
1020 |
|
|
|
|
|
27.0 |
26.6 |
|
ACA-472MG |
|
1.4 |
|
8.7* |
4.2* |
|
2.6* |
2.5* |
|
747* |
|
156 |
|
|
|
|
|
32.6 |
25.5 |
|
ACAHC467MG |
|
0.2 |
|
21.2* |
5.7 |
|
36.5 |
14.1* |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
27.7 |
30.9 |
|
AX852 MG |
|
0.4 |
|
15.0* |
5.2 |
|
29.5 |
48.8 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
28.3 |
40.2 |
|
AX878MG |
|
0.7 |
|
25.8 |
9.2 |
|
11.0* |
18.4* |
|
8196 |
|
1440 |
|
|
|
|
|
37.4 |
37.2 |
|
AX886MG |
|
2.0 |
|
20.5* |
8.6 |
|
19.1 |
17.6* |
|
6685 |
|
830 |
|
|
|
|
|
28.6 |
36.5 |
|
BZ Chiv.Plus GLR |
|
3.7 |
|
50.8 |
|
|
16.5* |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
40.4 |
|
|
DK699 MG |
|
0.3 |
|
13.3* |
|
|
17.7 |
|
|
1191 |
|
346 |
|
|
|
|
|
40.7 |
|
|
H2741 MG |
|
1.2 |
|
27.9 |
6.3 |
|
6.0* |
15.3* |
|
5503 |
|
1004 |
|
|
|
|
|
28.8 |
|
|
I-880 |
|
0.8 |
|
22.1 |
4.9 |
|
11.1* |
19.4* |
|
685* |
|
136 |
| |