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RESUMEN
Esta es una enfermedad del género Gallus causada por Haemophilus
paragallinarum. La bacteria necesita para su crecimiento de la adición del ácido
nicotín-adenín-dinucleótido (NAD), aunque se han descripto cepas independientes en
Sudáfrica que adquieren su independencia mediante un plásmido transmisible por
transformación. Los signos clínicos más comunes son descarga nasal, hinchazón facial,
lagrimeo, anorexia y diarrea. Es una dolencia muy importante en gallinas ponedoras sobre
todo porque reduce la producción de huevos aunque también se han descripto brotes en
pollos parrilleros en Norte y Sud América. La enfermedad clásica afecta únicamente al
tracto respiratorio superior causando sinusitis y conjuntivitis aunque en asociación con
otras enfermedades se han encontrado lesiones de neumonía, aerosaculitis, septicemia y
artritis. Esta bacteria sobrevive sólo pocas horas fuera del ave por lo cual sería
recomendable desarrollar un medio de transporte para hisopados del seno infraorbitario. En
el futuro el diagnóstico bacteriológico por el método clásico de aislamiento podría
ser reemplazado por una nueva prueba de PCR que es más sensible y rápida pero que, sin
embargo, no diferencia serovariedades. El diagnóstico serológico todavía requiere de
más investigación para desarrollar una prueba que tenga aplicación en poblaciones
avícolas. Los antígenos hemoaglutinantes se relacionan con la patogenicidad. Se
distinguen tres serovariedades (A, B y C) por una prueba de hemoaglutinación inhibición.
En Argentina y Brasil existen cepas A variantes que no son detectadas por los anticuerpos
monoclonales específicos para cepas A. Las cepas B de la Argentina son genéticamente
distintas a otras cepas del mundo de cualquier serovariedad. Tanto en Argentina como en
Sudáfrica se han descripto cepas C que no tienen protección cruzada entre sí cuando las
aves vacunadas son desafiadas.
Las vacunas inactivadas destinadas al mercado internacional
se elaboran por grandes firmas comerciales con cepas estándar de las tres serovariedades
mientras en los mercados nacionales firmas comerciales locales preparan vacunas que
incluyen cepas regionales. El uso de cepas regionales serotipificadas se justifica pues
tanto en Argentina como en Sudáfrica se han producido fallas vacunales debidas a la
aparición de cepas variantes no incluidas en las vacunas inactivadas que se utilizaban.
Las futuras investigaciones deberían orientarse hacia la búsqueda de nuevas vacunas
vivas basadas en cepas atenuadas, que pudieran utilizarse en reemplazo de las actuales
bacterinas, para lograr de ese modo protección cruzada entre las todas las serovariedades
y sus variantes antigénicas.
SUMMARY
Infectious coryza review: Research proposals for diagnosis and control
This is a disease of the genus Gallus caused by Haemophilus
paragallinarum. The bacterium requires addition of nicotinamide adenine dinucleotide
(NAD) for growth although independent South African strains have been described. These
strains may acquire its independence by means of a plasmid transmissible by
transformation. The common clinical signs are nasal discharge, facial swelling,
lacrimation, anorexia and diarrhoea. This is an important disease in laying hens mainly
because it reduces the egg production although outbreaks in broilers have also been
described in North and South America. The classic disease only affects the higher
respiratory tract causing sinusitis and conjunctivitis but in association with other
diseases lesions of pneumonia, aerosaculitis, septicaemia and arthritis have also been
encountered. This bacterium survives only few hours out of the bird, so development of a
new transport media for infraorbital sinus swabs is recommended. In future the standard
bacteriology method could be replaced by a new PCR test which is more sensitive and
quicker to perform but nevertheless is unable to differentiate between serovars.
Serological diagnosis still requires more research to find a suitable test for poultry
populations. Haemoglutinant antigens correlate with pathogenicity. Three serovars (A, B
and C) are recognised by an haemoagglutination inhibition test. Variant serovar A strains
have been described in Argentina and Brazil which are not detected by specific serovar A
monoclonal antibodies. Serovar B strains from Argentina are genetically distinct from
strains isolated from all over the world regardless of the serovar. In Argentina and South
Africa there are different serovar C strains which did not cross-protect among themselves
when vaccinated chickens are challenged. Inactivated vaccines aimed to the international
market are made by big commercial enterprises which rely its production on standard
strains of the three serovars whereas in national markets local commercial firms make
vaccines including regional strains. Usage of regional serotyped strains is justified
because inactivated vaccine failures due to variant strains not included in the vaccine
currently employed have been described, both in Argentina and South Africa. Future
research should be aimed to search for new live vaccines based on attenuated strains which
might replace the present bacterins in order to achieve cross protection among all
serovars and its antigenic variants.
INTRODUCCIÓN
La Coriza Infecciosa es una enfermedad respiratoria de
las gallinas domésticas causada por la bacteria Haemophilus paragallinarum. Otras
especies animales no se enferman exceptuando los faisanes y gallinas de Guinea. La
enfermedad está difundida mundialmente y causa importantes pérdidas económicas a la
industria avícola sobre todo al disminuir la producción de huevos. Recientemente se ha
descripto también esta enfermedad en pollos parrilleros de Norte y Sud América7,19,21
estando asociado H. paragallinarum con otros agentes bacterianos y víricos. El ser
humano no es susceptible y por lo tanto la coriza no tiene implicancia para la salud
pública.
El objetivo de esta revisión es brindar a los lectores
las últimas novedades y resaltar, de manera concisa, los principales aspectos generales
de interés para las ciencias veterinarias. También se advertirá sobre los temas en los
cuales se requiere dedicar más esfuerzos para investigar y cómo se deberían desarrollar
nuevas estrategias para la profilaxis y el control de esta importante enfermedad. Por
razones de espacio se han seleccionado las citas bibliográficas de las últimas
revisiones sobre el tema, agregando sólo algunos trabajos específicos de interés para
completar los conceptos que se discuten. Se revisará con mayor detalle la información
referente a nuestro país para aportar elementos prácticos de consulta y sobre todo
recomendaciones aplicadas a nuestro medio.
ETIOLOGÍA
El género Haemophilus ha sido tradicionalmente
definido como integrado por bacterias Gram negativas que requieren uno o dos factores de
crecimiento: hemina (factor X) y nicotín-adenín-dinucleótido (NAD o factor V). Dentro
de este género H. paragallinarum es el agente etiológico de la coriza infecciosa1-7.
Otras tres especies bacterianas de la gallina doméstica, antes integrantes del género Haemophilus
y descriptas en conjunto como H. avium, se encuentran actualmente ubicadas dentro
del género Pasteurella: P. avium y P. volantium y "Pasteurella
especie A". Las dos primeras son completamente apatógenas mientras que la última se
ha descripto como levemente virulenta para el tracto respiratorio de la gallina, aunque
ninguna de ellas es causante de coriza.
Clásicamente estas cuatro especies bacterianas
requieren únicamente del NAD para desarrollar1,2,7. Originalmente la bacteria
considerada el agente causal de la coriza infecciosa se denominó H. gallinarum y
erróneamente se demostró que requería ambos factores de crecimiento. Ello fue debido a
que los antiguos medios de cultivo disponibles para las pruebas tenían serias
deficiencias. Por ello, se cuestiona la vieja descripción de H. gallinarum y sólo
se considera la existencia de H. paragallinarum, que necesita sólo del NAD para su
crecimiento1,6. Es interesante acotar que varios de los discos comerciales
actuales erróneamente identifican a H. paragallinarum como dependiente del factor
X por lo cual se debe realizar la prueba de la porfirina en vez de la prueba con los
mencionados discos4. H. paragallinarum es realmente un hemófilo
atípico. De hecho existe evidencia taxonómica de que esta especie bacteriana se
encuentra más estrechamente relacionada con el género Actinobacillus que con el
género Haemophilus1.
El concepto taxonómico que hasta ahora se sustentaba
para definir el género Haemophilus ha sido bruscamente cambiado en la literatura
internacional cuando en Sudáfrica se describieron brotes de coriza infecciosa causados
por cepas de H. paragallinarum NAD independientes que son taxonómicamente muy
similares a las cepas clásicas 12. Estas bacterias adquieren la capacidad de
sintetizar el NAD al captar el DNA de un plásmido por transformación11. Este
plásmido puede además difundirse por transformación entre distintas cepas de H.
paragallinarum y posiblemente también entre las citadas pasteurelas NAD dependientes
de las aves. Quizás por este motivo en Sudáfrica también existen cepas NAD
independientes de P. avium, P. volantium y "Pasteurella especie
A"12. Es importante acotar que en este país también se describieron
cepas de H. influenzae de origen humano que desarrollan también independientes del
NAD11. Esto significa que en Sudáfrica podría existir una infección
generalizada por el citado plásmido. Más interesante aún es que las cepas transformadas
mantienen inalterados sus antígenos hemoaglutinantes (AgHems) por lo cual sería posible
eliminar en el laboratorio la dependencia del NAD en cepas destinadas a la elaboración de
vacunas13.
Este nuevo concepto permitiría elaborar vacunas con cepas de más
fácil crecimiento al eliminar la dependencia del NAD. Esta posibilidad debe ser
considerada con mucha cautela pues las cepas de H. paragallinarum independientes
del NAD han demostrado ser muy patógenas y de hecho van reemplazando paulatinamente a las
dependientes en los brotes de la coriza que se registran en Sudáfrica17. Por
ello, para un país como el nuestro, en el cual no se han registrado aislamientos de cepas
independientes del NAD sería peligroso introducir este plásmido para transformar a las
cepas regionales, destinadas a la elaboración de vacunas, si no se cuenta con una muy
estricta seguridad biológica. Aún más, si bien la coriza infecciosa existe en nuestro
país desde hace varios años24, hasta la fecha no se han detectado cepas
independientes del NAD por lo cual este tipo particular de coriza infecciosa debería ser
considerada una enfermedad exótica cuando es causada por cepas NAD independientes.
PATOGÉNESIS
H. paragallinarum infecta al ave por vía
respiratoria y luego de un corto período de incubación, que varía entre 1 a 3 días,
produce una enfermedad que se manifiesta por inflamación catarral de los senos
paranasales. Dado que esta bacteria sobrevive únicamente durante unas 5 hs fuera del ave7,
el contagio sólo se produce a través de los animales infectados, que ya han padecido la
enfermedad y que permanecen como portadores de la bacteria en la granja durante prolongado
tiempo. En la coriza clásica no complicada las lesiones generalmente quedan confinadas al
tracto respiratorio superior. La sinusitis puede estar asociada a inflamación de los
barbillones, conjuntivitis o queratitis. Los síntomas clínicos persisten por 3 a 7 días
y luego se produce su remisión. Los cambios patológicos que se desencadenan a partir de
las 20 horas post-infección (PI) alcanzan su máxima severidad a los 7-10 días PI y la
reparación subsecuente recién finaliza a los 14-21 días PI4.
En las gallinas ponedoras causa alta morbilidad, baja o
nula mortalidad y una importante pérdida en la producción de huevos, la que generalmente
oscila entre un 10% y un 40%. En pollos parrilleros puede causar un cuadro similar al
descripto como "cabeza hinchada"19,21. Los casos de neumonía y
aerosaculitis son menos frecuentes aunque también suelen ocurrir en las infecciones puras
por estos hemófilos cuando las cepas infectantes tienen capacidad para producir
septicemia. En estos casos se ha aislado H. paragallinarum de órganos internos,
articulaciones y de globos oculares con o sin lesiones21. Cuando se producen
casos de coriza infecciosa complicada con Mycoplasma sp. las lesiones respiratorias
se agravan siendo comunes las neumonías y aerosaculitis complicadas con E.coli,
prologándose la duración de la enfermedad hasta por 50 días4. Muchas veces
cuando las lesiones ya se encuentran en franca remisión y H. paragallinarum
ya no
puede aislarse del tracto respiratorio, P. gallinarum produce a continuación una
sinusitis y panoftalmía purulentas muy severas, con pérdida del globo ocular y reemplazo
de su contenido por masas caseosas. En Argentina P. gallinarum es el agente
infeccioso oportunista más común en gallinas ponedoras mientras que en aves más
jóvenes, como los pollos parrilleros la bacteria más frecuentemente asociada a casos
coriza infecciosa es E.coli21.
SÍNTOMAS CLÍNICOS
La coriza infecciosa ha sido descripta como una
enfermedad sólo importante para la gallina en postura. Sin embargo esta enfermedad ocurre
tanto en pollos parrilleros y pollas en recría como en gallinas ponedoras y
reproductoras. Los síntomas más comunes son descarga nasal, tumefacción facial,
lagrimeo, anorexia y diarrea. Cuando la infección se difunde al tracto respiratorio
inferior los animales afectados evidencian rales. Como consecuencia de estos síntomas
disminuye el consumo de alimentos y agua con el consiguiente retardo en el crecimiento o
disminución de la postura, aumentando el número de aves que deben descartarse4.
En pollos parrilleros se han descripto casos más severos, aunque menos frecuentes,
caracterizados por celulitis fibrinopurulenta de la cabeza y barbillones, aerosaculitis,
septicemia generalizada y artritis7,21.
En los casos de coriza no complicada generalmente se
produce alta morbilidad y baja o nula mortalidad . Sin embargo, si la cepa infectante es
muy patógena o si existe asociación con otros agentes infecciosos puede ocurrir alta
mortalidad. De hecho en Argentina, India, Moroco, Sudáfrica y Tailandia se han descripto
casos de Coriza infecciosa causantes de mortalidad producida cepas por cepas de H.
paragallinarum muy patógenas y con frecuencia asociadas a otros agentes víricos o
bacterianos3,4,21.
CORIZA INFECCIOSA COMPLICADA
Cuando H. paragallinarum se asocia con otros
agentes se agrava el curso de la enfermedad, que entonces se denomina "coriza
infecciosa complicada". Entre los agentes bacterianos más comunes deben mencionarse Escherichia
coli, P. gallinarum y Mycoplasma gallisepticum y menos frecuentemente P.
haemolytica. P. multocida, M. synoviae y Salmonella enterica3,4,19,21.
Más recientemente se describe a una nueva especie, denominada Ornithobacterium
rhinotracheale27, como agente asociado a coriza infecciosa y con capacidad
patógena para producir per se infecciones respiratorias en gallinas ponedoras y
pollos parrilleros3,28. Las citadas P. avium, P. volantium y
"Pasteurella especie A" también pueden asociarse con H.
Paragallinarum3,6. La coriza infecciosa puede ocurrir en forma simultánea
con diversas infecciones virales del tracto respiratorio, siendo las asociaciones más
frecuentes con la viruela, bronquitis y laringotraqueítis infecciosas4.
PATOLOGÍA
H. paragallinarum produce inflamación catarral
aguda de las membranas mucosas de la nariz y senos infraorbitarios. Frecuentemente se
produce edema subcutáneo de la cabeza y barbillones y conjuntivitis catarral. Los cambios
en la mucosa de la cavidad nasal, senos y tráquea consisten en descamación,
desintegración e hiperplasia del epitelio glandular y mucosal, edema e hiperemia con
infiltración de heterófilos, mastocitos y macrófagos en la lámina propia. Cuando se
afecta el tracto respiratorio inferior se produce bronconeumonía catarral aguda con
presencia de heterófilos y restos celulares que ocupan la luz de los bronquiolos
secundarios y terciarios; las células epiteliales de los capilares se encuentran
inflamadas e hiperplásicas. Los alvéolos tienen inflamación catarral caracterizada por
tumefacción e hiperplasia celular con abundante infiltración de heterófilos. Los
productos de la inflamación de los mastocitos, heterófilos y macrófagos pueden ser los
responsables de los severos cambios vasculares y daño celular de la coriza infecciosa4.
ANTÍGENOS DE H. PARAGALLINARUM
Se reconocen tres tipos de antígenos: L (sensible al
calor y a la tripsina), HL (sensible al calor y resistente a la tripsina) y HS (estable al
calor y resistente a la tripsina). Los antígenos L existen en tres formas (L1, L2 y L3).
Los antígenos L1 y L2 son respectivamente responsables de la especificidad de
serovariedades de Page A y C. El resto de los antígenos (L3, HL y HS) son comunes a todas
las cepas4.
El antígeno más importante de las cepas patógenas es
el antígeno hemoaglutinante (AgHem). Una cepa de H. paragallinarum es patógena
cuando es capaz de adherirse a las células que tapizan el epitelio respiratorio. El
requisito de adherencia al tracto respiratorio tiene estrecha relación con la
hemoaglutinación. Esto se debe a que los eritrocitos y las células del epitelio
respiratorio comparten antígenos comunes. De hecho, las cepas que pierden su capacidad de
hemoaglutinar también dejan de ser patógenas. La vacunación de aves con AgHem
purificado mediante anticuerpos monoclonales (AcM) induce protección frente a desafíos23.
Además la administración pasiva por vía intraperitoneal de AcM contra el AgHem
purificado suprime el crecimiento de H. paragallinarum en el epitelio nasal o
sinusal22. Estos AcM tienen actividad bactericida in vitro y
posiblemente ejerzan mecanismos de opsonización in vivo. Este antígeno
hemoaglutinante no siempre se expresa espontáneamente pues algunas cepas lo tienen
enmascarado por antígenos capsulares superficiales que impiden su expresión. Como
veremos más adelante mediante procedimientos de laboratorio es posible eliminar estas
cápsulas para tornar a las cepas hemoaglutinantes7.
Además del AgHem se han descripto otros antígenos de H.
paragallinarum que también inducen protección en las aves inmunizadas. Entre ellos
cabe mencionar la cápsula, polisacáridos, lipopolisacáridos y proteínas de membrana
externa4.
ESQUEMAS DE SEROTIPIFICACIÓN Y
SEROVARIEDADES
En todos estos esquemas se empleó suero policlonal
hiperinmune de conejo para clasificar antigénicamente a las cepas. El primer estudio
serológico de H. paragallinarum lo realizó Page, quien mediante pruebas de
aglutinación en placa describió tres serovariedades: A, B y C. Otros autores
describieron distintos esquemas de serotipificación que posteriormente se equipararon al
original de Page: Sawata 1 (Page A) y 2 (C) y Kume I (A), II (C) y III (B). Actualmente
las tres serovariedades de Page pueden ser reconocidas por pruebas de inhibición de la
hemoaglutinación (HI). Existen dos pruebas de HI que utilizan cepas de referencia con
AgHem de cada una de las tres serovariedades de Page y eritrocitos de pollo fijados con
glutaraldehído. Las cepas de la serovariedad A son generalmente muy hemoaglutinantes
mientras que las cepas de las serovariedades B y C necesitan tratamientos previos de los
antígenos antes de realizar la prueba de HI. Para ello se utilizan tratamientos con
hialuronidaza o también sonicación combinada con tiocianato de potasio6,7. La
prueba de HI descripta por Blackall et al. es la más utilizada y detecta las tres
serovariedades de Page mientras que la de Kume et al. permite la detección de 4
subtipos dentro de cada una de las serovariedades A y C de Page3,6,7. Estos
subtipos se denominan A1, A2, A3 y A4 y C1, C2, C3 y C4. Esta clasificación se realiza
mediante sueros adsorbidos aunque no se utiliza rutinariamente porque la técnica es
complicada y los subtipos no tienen relación con la protección vacunal3.
H. PARAGALLINARUM SEROVARIEDAD B
Una mención especial merece la historia sobre las cepas
de la serovariedad B. Durante muchos años se creyó que esta serovariedad, representada
por las únicas 2 cepas disponibles (Spross y 0222), no existía realmente sino que estaba
compuesta por un grupo de cepas variantes apatógenas y no capsuladas de la serovariedades
A o C que habían perdido su antígeno específico de serovariedad4. Por ese
motivo durante varios años la mayoría de las vacunas contenían únicamente a las
serovariedades A y C. Actualmente, debido a la aparición de cepas patógenas y capsuladas
de esta serovariedad en Argentina, Sudáfrica, Brasil y Filipinas este antiguo concepto
fue dejado de lado y actualmente no se discute que las cepas de la serovariedad B existen
como tales y deben ser incluidas en las vacunas3, 5, 25,26. Además Bowles et
al.9 en un estudio comparativo determinaron la diversidad
genética y las relaciones entre 118 cepas provenientes de seis continentes analizando la
variación de la movilidad electroforética en 8 enzimas metabólicas codificadas por
genes cromosomales. Es interesante destacar que en este trabajo las cepas del mundo se
agruparon en dos clusters heterogéneos mientras 9 cepas de la serovariedad B de la
Argentina ocuparon un cluster diferente, demostrando que las mismas están genéticamente
bien distanciadas del resto de las cepas estudiadas, independientemente de la serovariedad
a la cual pertenecen. Esto significa que las cepas B de la Argentina fueron incluso
diferentes a otras cepas B de diversas regiones del mundo.
Es evidente que existe diversidad antigénica entre las
cepas de la serovariedad B3. Se ha demostrado que las vacunas bivalentes
preparadas con la serovariedades A y C brindan protección cuando las aves son desafiadas
con la cepa B Spross aunque estas mismas vacunas son ineficaces para proteger las aves
cuando se desafían con dos cepas B de Sudáfrica 29. En otro estudio realizado
en Argentina se demostró que una vacuna trivalente preparada con cepas de referencia de
las tres serovariedades fue ineficaz para proteger a las aves cuando fueron desafiadas con
cepas B de la Argentina25,26. Por ello es necesario subrayar que se requieren
completar las investigaciones con las cepas B y es posible que las mismas incluyan
subtipos de interés para la selección de cepas vacunales.
ANTICUERPOS MONOCLONALES
En Sudáfrica se utilizó un panel de 3 AcM de ratón
denominados V1, F1 y VF3 para demostrar que el antígeno lipopolisacárido V1 que expresa
la cepa vacunal de referencia de la serovariedad A (0083) casi no existía en las cepas
que producían los brotes de coriza en el campo; en cambio en éstas predominaba el
antígeno proteico F1, que también era producido en menor cuantía por las cepas
vacunales. Este trabajo demostró que existen variaciones en la expresión los antígenos
a través del tiempo y que en esa oportunidad se producían vacunas con cepas que tenían
antígenos de poca utilidad para ejercer protección, pues no eran representativos de la
real situación de las cepas de campo presentes en ese momento10.
En Japón se desarrolló un AcM de ratón que detecta a
todas las cepas de la serovariedad A del mundo excepto a algunas cepas de la serovariedad
A de la Argentina y del Brasil8. También se obtuvo otro AcM específico para
subtipos A1 y A2 de Kume y tres AcM para diversos subtipos C de Kume. Interesa destacar
que ninguna de las cepas de la serovariedad B es detectada por los AcM conocidos anti-A o
anti-C, ya sean sudafricanos o japoneses. Estos estudios demuestran dos cosas: por un lado
las cepas B son distintas y no representan variables antigénicas de las cepas A o C. Por
otro lado las cepas A de la Argentina y del Brasil son diferentes a las cepas A del resto
del mundo. Habría que demostrar si estas diferencias antigénicas representan en realidad
diferencias en la protección vacunal de acuerdo con el tipo de cepa regional que se
utilice en la elaboración de las vacunas.
DIAGNÓSTICO BACTERIOLÓGICO
Se recomienda el estudio de 3 o 4 aves con síntomas
agudos de coriza4. Si se seleccionan las aves luego del 5º al 7º día PI
puede que H. paragallinarum ya no se encuentre y sólo se obtengan bacterias
complicantes de la enfermedad. El procedimiento de toma de muestras se debe efectuar con
estricta esterilidad. Para ello, una vez sacrificada el ave, se cauteriza la piel ubicada
debajo de los ojos, se practica una incisión sobre el seno paranasal correspondiente, se
separa la piel en la incisión y se introduce en la cavidad del seno un hisopo estéril
humedecido en un caldo nutritivo o solución salina fisiológica tamponada a pH neutro4,19.
Lo más recomendable es el cultivo antes de las 5 horas debido a la reducida viabilidad de
H. paragallinarum en los hisopados7. En el INTA de Balcarce hemos desarrollado
un medio de transporte que permite la supervivencia de las bacterias por varios días
(datos no publicados) cuando se combina caldo Columbia con sangre equina hemolizada al 7%
y antibióticos7,24 para inhibir a los contaminantes en una base de agar
semisólido; consideramos que estos estudios deberán ser profundizados dado que a veces
se requieren efectuar aislamientos en granjas distantes del laboratorio. Para la siembra
de los hisopos pueden usarse placas de agar sangre con el agregado de estrías
"alimentadoras" de Staphylococcus spp., que eliminan factor V, o bien
usar agar chocolate o agar con sangre hemolizada en vez de los estafilococos6,7,19.
Las colonias de H. paragallinarum son mucho más grandes y visibles cuando se
utiliza agar con sangre chocolatada o hemolizada19. El uso de medios de cultivo
selectivos con antibióticos e incubados a 37° C, durante 48 horas en una atmósfera
microaerofílica, es un procedimiento que permite diferenciar y aislar a los hemófilos en
pureza, aún cuando la flora bacteriana sea compleja24. La atmósfera
microaerofílica puede obtenerse mediante el clásico método de la vela que consiste en
incubar las placas en un recipiente herméticamente cerrado con una vela que se mantiene
encendida hasta que se apaga al consumirse parte del oxígeno contenido en el recipiente o
bien usando las distintas opciones disponibles para la obtención de atmósferas para el
aislamiento de bacterias del género Campylobacter. La identificación de H.
paragallinarum debe ser efectuada mediante pruebas bioquímicas diferenciales1,3,6,24.
Como se señaló anteriormente la dependencia o independencia del NAD no permite inferir
si se trata de H. paragallinarum o de pasteurelas, sobre todo en aquellos lugares
donde existen cepas independientes del NAD17.
Los hemófilos fermentan la glucosa con formación de
gas y como las pasteurelas reducen los nitratos a nitritos y son oxidasa positivos. Las
pasteurelas de las aves son todas catalasa positivas, mientras que el H.
paragallinarum
y el O. rhinotracheale son negativos3,27. O. rhinotracheale no
requiere NAD. La diferenciación fenotípica entre las especies debe ser realizada
mediante la acidificación de algunos hidratos de carbono1,3,6. H.
paragallinarum no fermenta ni a la galactosa ni a la trehalosa mientras que todas las
pasteurelas del grupo "H. avium" lo hacen rápidamente (cuadro 1). Los H.
paragallinarum NAD independientes son negativos a la prueba de la b -galactosidasa y
no fermentan a la maltosa mientras que los NAD dependientes son siempre positivos a ambas
pruebas4. Una característica diferencial descubierta por nosotros en el INTA
de Balcarce es la incapacidad de H. paragallinarum de reducir el clorhidrato de
2,3,5-trifenil-tetrazolio o TTC (incoloro) mientras que todas las pasteurelas y
enterobacterias lo reducen a formazán (de color rojo)24.
Cuadro 1. Diferenciación de H. paragallinarum,
pasteurelas del grupo "H. avium" y O. rhinotracheale.
| Pruebas |
O. rhinotracheale |
H. paragallinarum |
P. avium |
P. volantium |
Pasteurella species A |
| Catalasa |
-a |
- |
+ |
+ |
+ |
| Pigmento |
- |
- |
+ |
+ |
- |
| Microaerofilia |
+ |
+ |
- |
- |
- |
| b
-galactosidasa |
+ |
+b |
- |
+ |
V |
| Arabinosa |
- |
- |
- |
- |
+ |
| Galactosa |
+ |
- |
+ |
+ |
+ |
| Maltosa |
+ |
+b |
- |
+ |
V |
| Manitol |
- |
+ |
- |
+ |
V |
| Sorbitol |
- |
V |
- |
V |
- |
| Sacarosa |
- |
V |
+ |
+ |
+ |
| Trehalosa |
- |
- |
+ |
+ |
+ |
-a: el 90% de las cepas de O.
rhinotracheale son catalasa negativas
+b: Los H. paragallinarum NAD
independientes son negativos a la prueba de b -galactosidasa y fermentación de la maltosa
DIAGNÓSTICO MOLECULAR
Recientemente se han descripto sondas de ADN y pruebas
de reacción en cadena por la polimerasa (PCR) específicas para detectar el ADN de
H.
paragallinarum directamente en hisopados de los senos paranasales. El PCR, aunque
todavía no está disponible comercialmente, parece ser una alternativa factible para
reemplazar los cultivos bacteriológicos por una técnica rápida. Esta prueba permite
obtener resultados en sólo 6 horas, lo cual constituye una ventaja sobre los cultivos,
que demoran en crecer entre 2 y 3 días y cuyo diagnóstico identificatorio final demora
por lo menos una semana. Además, por esta técnica más de 40 cepas de H.
paragallinarum fueron detectadas como positivas, incluyendo las NAD-independientes de
Sudáfrica y las variantes de Page serovar A de Brasil y Argentina así como las
particulares cepas B de la Argentina15. El PCR, llamado HP-2, es específico
puesto que ha dado reacciones negativas con bacterias estrechamente relacionadas a H.
paragallinarum como las NAD-dependientes P. volantium, P. avium y Pasteurella
spp. así como también con O. rhinotracheale18. El PCR HP-2 ha sido
exitosamente evaluado en aves experimentalmente inoculadas en Australia y en material
clínico en China. De hecho, en este último país, ha sido demostrado que este PCR tiene
mayor sensibilidad que los cultivos bacteriológicos14. Así, el PCR HP-2
detectó como positivas a 15 de las 39 aves estudiadas y a 6 de las 8 granjas
investigadas, mientras que, en las mismas muestras, el cultivo sólo detectó 8 aves y 4
granjas14. Todos estos diagnósticos fueron clínicamente confirmados en las
granjas, demostrando que esta técnica no sólo es más rápida sino que también es
altamente sensible y específica. Adicionalmente, se ha demostrado que cuando las muestras
han sido mantenidas hasta 180 días a 4° C ó -20° C la mayoría de las muestras
positivas permanecen positivas por el PCR. En contraste, todos los cultivos fallaron en
detectar a H. paragallinarum después de 3 días de conservación a 4° C ó -20°
C16. Si bien, a primera vista, esta tecnología parece ser muy compleja y
costosa, una vez adoptada podrá proporcionar diagnósticos muy rápidos y confiables3.
Sin embargo, este método tiene el inconveniente de que no detecta serovariedades de Page,
de modo que para efectuar un diagnóstico que incluya serotipificación de la cepa
actuante en un brote, es necesario el aislamiento de la bacteria y su posterior cultivo
para la producción de los correspondientes antígenos hemoaglutinantes.
DIAGNÓSTICO SEROLÓGICO
Se han desarrollado una variedad de pruebas serológicas
para detectar anticuerpos contra H. paragallinarum, tanto en aves vacunadas como en
enfermas. Así se han utilizado pruebas de aglutinación en placa, aglutinación con
látex, HI y agar gel precipitación1,3,7. Los anticuerpos aglutinantes
aparecen a los 10 o 14 días después de la infección o vacunación y pueden persistir
hasta un año después del contacto con la bacteria. En cambio, los anticuerpos
precipitantes se manifiestan a la 2º semana PI y sólo se mantienen hasta la 11º semana
PI1. Las aves se consideran serológicamente positivas cuando sus sueros
reaccionan sin diluir en las pruebas de aglutinación o bien con títulos bajos, de 1/5 o
mayores, en pruebas de HI. Antes de realizar estas pruebas se deben absorber los sueros
con suspensiones de 5 ó 10% de glóbulos rojos de pollo fijados con glutaraldehído para
eliminar las reacciones inespecíficas. Como se señaló anteriormente, las cepas de
distintas serovariedades de Page comparten antígenos comunes y por ello las pruebas de
aglutinación no detectan anticuerpos específicos de serovariedad sino un nivel general
de anticuerpos contra coriza infecciosa. La prueba de HI es la más específica de las
pruebas pues puede realizarse con cepas de cada una de las serovariedades de Page y es
también la más conveniente puesto que, como se reseñó más arriba, los AgHems tienen
relación directa con la protección3. Recientemente se desarrolló una prueba
de ELISA con AcM30 aunque esta prueba tiene serios inconvenientes que la hacen
poco práctica3. Por un lado no está comercialmente disponible y además sólo
sirve para la detección de algunas cepas de las serovariedades A y C. Además de existir
AcM específicos para detectar a las cepas de la serovariedad B , los AcM A fallan en
detectar el 40% de los aislamientos de la Argentina y del Brasil5,8 y los AcM C
no reaccionan con las cepas C-4 de Australia3. Todos estos resultados indican
que hasta la fecha no existe una prueba serológica de uso masivo que pueda usarse para
evaluar en forma sistemática el nivel inmunitario de la población avícola.
Indudablemente, este es un tema en el que se requiere más investigación.
DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL
En pollos parrilleros es importante diferenciar la
coriza infecciosa del síndrome de cabeza hinchada causado por el virus de la
rinotraqueítis de pavo (TRT); en esta enfermedad no existe inflamación de los senos
paranasales sino que la tumefacción se localiza únicamente alrededor de los ojos. En
estos casos la coriza infecciosa se confirma mediante la demostración de ausencia de
serología positiva a virus TRT y el aislamiento, PCR o detección por inmunoperoxidasa en
senos infraorbitarios de H. paragallinarum.
Cuando las cepas de H. paragallinarum son
invasivas y producen aerosaculitis, que puede estar o no asociada a otras bacterias, es
importante efectuar un diagnóstico diferencial con la enfermedad crónica respiratoria.
Cuando se produce extensión del proceso inflamatorio a barbillones es importante
distinguir esta enfermedad del cólera crónico por P. multocida. Si se producen
casos de artritis es importante cultivar también con medios que posibiliten el
aislamiento de H. paragallinarum además de buscar otros agentes causales como
virus, Mycoplasma gallisepticum, M. synoviae, Staphylococcus
aureus, P. multocida, P. gallinarum o Salmonella enterica entre otros19,21.
También se cita que la hipovitaminosis A y la viruela en ocasiones pueden producir
síntomas clínicos similares7.
INFECCIÓN EXPERIMENTAL Y ENSAYOS DE
PROTECCIÓN CRUZADA
Como se expuso más arriba, exceptuando los faisanes y
gallinas de Guinea, ningún ave ya sea doméstica o silvestre es susceptible a la
infección por H. paragallinarum. Tampoco son susceptibles los animales de
laboratorio como los conejos, ratones o cobayos4. Por ello, para reproducir
experimentalmente esta enfermedad lo mejor es utilizar su huésped natural, el género Gallus
gallus. El método de infección más adecuado es la inoculación en el seno
infraorbitario de cultivos de H. paragallinarum. Por la vía intranasal también es
posible reproducir la enfermedad pero en este caso los resultados suelen ser variables20.
Los pollitos BB son resistentes a la infección por vía
respiratoria, por ello se deben emplear pollitos de más de 7 días de edad cuando se
utiliza esa vía. Los pollos de 4-8 semanas se infectan en un 90% mientras que pollos de
13 semanas de edad o mayores son 100% susceptibles. En general, el período de incubación
se acorta y el curso de la enfermedad tiende a alargarse en aves de mayor edad4.
Es necesario tener modelos de reproducción de la
enfermedad para la correcta selección de cepas de campo a emplear en las vacunas. Estos
modelos pueden utilizarse para conocer la difusión horizontal, patogenicidad y capacidad
septicémica de las cepas en estudio20. Además, como veremos más adelante,
los mismo modelos combinados con la aplicación de vacunas experimentales pueden
utilizarse para evaluar el grado de protección que ofrecen las vacunas frente al desafío
de la cepa vacunal comparada con otras de distinto origen. Estos ensayos se denominan
pruebas de protección cruzada2,25.
Para conocer el grado de difusión horizontal de las
cepas se utiliza un modelo que consiste e inocular una o dos aves por vía intrasinusal
con diez millones de bacterias viables y dejarlas alojadas durante 10 días en estrecho
contacto con otros 6-8 animales de igual tipo y edad; las aves se observan diariamente
para determinar grado contagio y al cabo de ese tiempo se cultivan ambos senos
infraorbitarios20.
En cambio, para conocer la patogenicidad de las cepas,
la misma dosis de inóculo se aplica a todos las aves del grupo y éstas se sacrifican
entre el 5-6 día PI, realizándose entonces cultivos bacteriológicos de ambos senos
infraorbitarios y globos oculares20. Este último modelo se utiliza también
para evaluar vacunas en pruebas de protección cruzada. En estos ensayos el porcentaje de
protección se define como el porcentaje de aves vacunadas que no presentan signos
clínicos, que no tienen mucus en los senos infraorbitarios y en los cuales no es posible
aislar la cepa inoculada26.
Con el objetivo de determinar la capacidad septicémica
de aislamientos de campo se utiliza un modelo que consiste en inocular pollitos BB de un
día de edad, libres de patógenos específicos (SPF) o bien convencionales, por vía
intraperitoneal con 106 y 107 bacterias viables de H.
paragallinarum. Sólo las cepas invasivas son capaces de producir elevada mortalidad20.
PROTECCIÓN CRUZADA ENTRE SEROVARIEDADES
Y VACUNACIÓN
Las aves que se han recobrado de una infección natural
adquieren inmunidad contra infecciones subsecuentes, tanto causadas por la misma
serovariedad de Page que las infectó originalmente como contra cepas de las otras
serovariedades de Page. En otras palabras, la infección natural produce protección
cruzada entre las distintas serovariedades de Page. En forma similar, cuando las aves son
vacunadas con una cepa viva adquieren inmunidad contra cualquiera de las tres
serovariedades de Page. Esta inmunidad se desarrolla a partir de la 2º semana
post-vacunación y tiene larga duración. En general, si las pollas se exponen a una cepa
viva de H. paragallinarum durante la recría quedan protegidas contra una caída de
la postura en el período de producción2,6.
Por el contrario, cuando se inyectan cepas muertas de H.
paragallinarum la protección cruzada es muy baja o bien queda limitada a la
serovariedad que se utilizó para inmunizar a las aves. Se admitió entonces, durante
varios años, que si, por ejemplo, un ave se inmuniza con la serovariedad A este animal
queda protegido contra sucesivas infecciones por otras cepas distintas pero pertenecientes
a esa misma serovariedad A. Lo mismo se consideraba para el caso la serovariedad C. Sin
embargo algunos tipos de vacunas muertas podrían ejercer algún tipo de protección
cruzada parcial. De los tres tipos descriptos según el tipo de cultivo empleado para su
producción - caldo de cultivo, cultivo de tejidos y embrión de pollo - sólo las dos
últimas ofrecen alguna protección cruzada2. Por lo tanto las bacterinas
elaboradas en caldo de cultivo, que son las que se utilizan habitualmente, no producen
ningún tipo de inmunización cruzada. Estas bacterinas, para ser eficaces, deben contener
en su formulación cepas regionales representativas de las serovariedades de Page
presentes en el área geográfica a dónde se van a usar.
Existen varias excepciones a lo enunciado arriba sobre
la especificidad de protección para cada serovariedad. Esto se debe a la aparición de
cepas variantes. Tanto en Argentina como en Brasil, existen alrededor de un 40% de
aislamientos de la serovariedad A de Page que hasta la fecha no han sido reconocidos por
el AcM específico para este serovar que reconoce todas las cepas del resto del mundo3,5,8,24.
Se ha especulado que estas cepas A variantes pueden ser bastante diferentes como para
ocasionar fallas vacunales .
También, como se expuso anteriormente, los aislamientos
de la serovariedad B de la Argentina son genéticamente muy diferentes a las cepas de
todas partes del mundo, independientemente de la serovariedad a la que ellas pertenezcan9.
Este hecho, unido a una falta de protección de las vacunas que contienen cepas B aisladas
en EEUU o en Europa cuando se desafían con cepas B de la Argentina, señala que las
últimas deberían ser incluidas en las vacunas a emplear en esa región25,26.
Existe también más evidencia que respalda la posibilidad de una diversidad antigénica
dentro de la serovariedad B de Page. Las vacunas bivalentes basadas en las serovariedades
A y C proveen protección contra desafíos efectuados con la cepa Spross de la
serovariedad B pero no contra dos serovariedades B de Sudáfrica29. Más aún
sólo existe protección parcial entre distintas cepas de la serovariedad B29.
El hecho de que el esquema de Kume sólo reconozca una sola serovariedad B (B-1) no es
evidencia de homogeneidad antigénica, sino más bien señala que se han examinado muy
pocas cepas de esta serovariedad y seguramente si estas se hubieran estudiado, las cepas B
de la Argentina posiblemente podrían conformar un nuevo grupo dentro del esquema de Kume3.
Por otra parte, los estudios de protección cruzada
realizados en Argentina sugieren la necesidad de incluir más de una cepa C en las
bacterinas que se usen en ese país25. Estos resultados son comparables con lo
descripto en Sudáfrica en donde el aumento de la incidencia del subtipo C-3 de Kume,
causó brotes de la enfermedad en aves vacunadas con bacterinas elaboradas exclusivamente
con cepas de los subtipos C1 o C23.
Todos estos datos señalan la necesidad de efectuar
estudios de protección cruzada con aislamientos actualizados de serovariedades A, B y C
presentes en cada región para poder así definir cuantas cepas deberían usarse en las
futuras bacterinas. El actual concepto de una vacuna muerta de uso universal deberá ser
revisado de ahora en adelante y se evidencia la necesidad de elaborar vacunas con cepas
regionales, que posiblemente tengan que contemplar la inclusión de más de una cepa de
cada serovariedad. Esto significa que debe revisarse el concepto actual de protección con
biológicos y elaborar vacunas inactivadas con mayor cantidad de cepas regionales o bien
iniciar nuevas investigaciones con vacunas vivas atenuadas que, en ese caso, sí podrían
tener aplicación universal. Es evidente que las investigaciones dirigidas hacia la
búsqueda de una cepa atenuada son proritarias.
ELECCIÓN Y CARACTERÍSTICAS DE LAS
VACUNAS
De acuerdo con lo expresado en el ítem anterior, las
vacunas vivas atenuadas deberían ser las de elección ya que las mismas producen
inmunidad cruzada entre las tres serovariedades de Page, además de brindar una sólida y
duradera inmunidad. Inicialmente estas vacunas habían dado resultados exitosos, puesto
que cultivos de una cepa C atenuada por mutaciones químicas, cuando fueron instilados en
el ojo protegieron contra el desafío de cepas patógenas de la serovariedad C y A6.
Desafortunadamente estas vacunas atenuadas no se utilizan por su falta de seguridad, dado
que se ha demostrado que estas cepas revierten in vivo al tipo patógeno cuando se
inoculan por vía intrasinusal6. Por otro lado, es posible obtener cepas
apatógenas naturales o mutadas in vitro que carecen del AgHem, pero se ha
demostrado que estas cepas son incapaces de proteger tanto contra serovariedades
homólogas como heterólogas de Page e inclusive fracasan en proteger a las aves vacunadas
contra su propia cepa parental patógena.
La falta de disponibilidad de cepas atenuadas ha
determinado que en algunas granjas se utilice el método de exposición controlada. Este
procedimiento consiste en vacunar las pollas con una bacterina entre las 15 y 18 semanas
de edad y luego, a las 20 semanas de edad, exponer a estas aves a una infección con una
cepa patógena regional. La exposición controlada tiene varios inconvenientes, puesto que
algunas aves pueden enfermar severamente, siendo entonces necesaria la administración de
antibióticos y además siempre quedan en la granja aves portadoras de cepas patógenas
que en el futuro pueden desencadenar brotes de coriza infecciosa en aves susceptibles4.
Las primeras bacterinas contra coriza infecciosa fueron
elaboradas inoculando H. paragallinarum en los sacos vitelinos de huevos
embrionados de 5-7 días de edad. En varios ensayos se ha demostrado que estas bacterinas
son incapaces de proteger a las aves vacunadas contra los síntomas clínicos de la coriza
infecciosa, a pesar de que disminuyen las lesiones secundarias de septicemia y
aerosaculitis y reducen la caída en la producción de huevos6. Por este motivo
se han dejado de utilizar y tienen, en cambio, amplia difusión las vacunas elaboradas en
caldo de cultivo. Los medios más utilizados son la infusión de carne de pollo, el medio
Casman y el caldo cerebro-corazón2,6. Existe un único reporte sobre el empleo
satisfactorio de cultivos de tejidos, aunque en la práctica éstos no se utilizan para la
producción de estas vacunas 2,6. A continuación se describen las
características de las bacterinas en caldo de cultivo que son más frecuentemente
empleadas.
Para que una bacterina en caldo brinde adecuada
protección deben considerarse varios aspectos que hacen a su producción. En primer
término deben usarse cepas vacunales representativas de las serovariedades predominantes
en la región en donde van a ser aplicadas. Además, estas cepas deben estar mantenidas de
modo tal que conserven inalterados sus atributos de virulencia; para ello las cepas deben
tener un mínimo de subcultivos desde que se realizó su primo-aislamiento hasta que
crecen en el fermentador. Para que ocurra la expresión de antígenos superficiales que
pueden estar relacionados con la protección es muy importante que diversas condiciones
del cultivo se ajusten. Entre las mismas cabe citar el volumen de inóculo inicial, pH,
porcentaje de cloruro de sodio, nivel de hierro libre, atmósfera y tiempo de incubación.
Una vez logrado el desarrollado bacteriano el uso de distintos agentes inactivantes tiene
también mucha importancia y constituye un aspecto de discusión; mientras que la
inactivación rápida con formalina tiene resultados variables de protección, la
inactivación más lenta con timerosal es eficaz en todos los estudios que hasta la fecha
se han realizado. Con respecto a los agentes adyuvantes tanto el hidróxido de aluminio
como los aceites minerales brindan adecuada protección. Sin embargo es necesario aclarar
que el aceite mineral de emulsión simple debe estar correctamente formulado pues se han
descripto casos de protección ineficaz con desarrollo de severas reacciones colaterales
en el punto de inoculación. En cambio, el aceite mineral de emulsión doble ha dado
siempre buenos resultados. Con respecto a la duración de la inmunidad se ha descripto que
la misma se prolonga hasta por 14 meses, tanto con adyuvantes de hidróxido de aluminio
como oleosos2,6.
Actualmente las vacunas comerciales son todas
inactivadas y debido a que actualmente se admite que la serovariedad B debe ser incluida,
puede asegurarse que todas son trivalentes. Los grandes laboratorios internacionales que
elaboran estas vacunas las preparan con cepas estándar internacionalmente reconocidas.
Estas vacunas internacionales se fabrican para ser usadas en diferentes países alrededor
del mundo, basándose en el concepto de las variaciones locales no justifican la
inversión de incluir cepas regionales o variar la composición de estas vacunas para
adaptarlas a las necesidades de cada región o país3. Estas grandes
compañías aseguran que sus vacunas son siempre efectivas cuando son elaboradas con estas
cepas internacionales y por lo tanto no se preocupan en incluir cepas regionales. Sin
embargo tanto en Argentina como en Sudáfrica se han registrado y publicado evidencias
concretas de fallas de protección3,25,26. Quizás por este motivo en Argentina
existen algunos laboratorios locales que comercializan bacterinas elaboradas con cepas
regionales, las que tienen buena demanda y aceptación en el mercado local.
PREVENCIÓN DE CORIZA INFECCIOSA
MEDIANTE VACUNACIÓN
Se recomienda vacunar con un nivel mínimo de antígeno
de cien millones de bacterias por dosis (1 x 108), inoculadas por vía
subcutánea detrás del cuello o intramuscular en la pechuga 2,6. Para pollas
en recría es conveniente vacunar antes de las 20 semanas de vida, administrando dos dosis
separadas por un intervalo de 3 a 4 semanas4. Si es necesario se pueden vacunar
los pollos parrilleros expuestos a brotes de coriza infecciosa con una sola dosis
administrada a los 15 o 20 días de vida, lográndose protección adecuada hasta la faena25.
Vale la pena comentar que rutinariamente se emplean estas vacunas solamente en las
gallinas ponedoras o reproductoras, siendo todavía poco frecuente el uso de las mismas en
pollos parrilleros. Es necesario investigar el efecto de la aplicación de estas vacunas
en los pollos parrilleros y sobre todo analizar su acción en el complejo de enfermedades
respiratorias, síndrome de cabeza hinchada y sanidad en general. Para que esta vacuna se
utilice en este tipo de aves debe ser económicamente accesible y por ello se debería
investigar la protección en pollos parrilleros jóvenes por dosis más bajas que las
normalmente se aplican en aves de mayor edad.
TRATAMIENTO
Varios antibióticos en diferentes combinaciones han
sido utilizados para tratar la coriza infecciosa en los animales afectados. Entre los
agentes terapéuticos más utilizados cabe citar la oxitetraciclina, eritromicina,
quinolonas y estreptomicina solas o en combinación con sulfonamidas y trimetoprima. Sin
embargo, ninguno de estos agentes terapéuticos es bactericida y H. paragallinarum
rápidamente genera resistencia a los antibióticos y quimioterápicos empleados. En las
granjas afectadas por la enfermedad luego del tratamiento se mantienen aves portadoras y
muchas veces son comunes las recaídas cuando el tratamiento con las drogas impide la
inmunización de todas las aves. Por ello, en esta enfermedad es muy importante la
prevención, ya que los tratamientos una vez instaurados no sólo no logran impedir la
merma en la producción sino que muchas veces es el mismo tratamiento el que agrava la
caída de la postura4.
PREVENCIÓN MEDIANTE MEDIDAS DE MANEJO Y
VACUNACIÓN
Dado que las aves portadoras que se han curado de la
infección constituyen el reservorio de H. paragallinarum en la granja, es
fundamental la compra de aves recriadas libres de la infección. Lo mejor es la cría de
las pollitas BB con un adecuado plan sanitario que contemple la vacunación contra coriza
infecciosa con bacterinas de reconocida eficacia y, si es posible, que contengan cepas
regionales representativas de la zona. La cría y recría de las aves de reposición debe
realizarse separadamente de las aves de mayor edad. En una granja que ha sufrido una
infección el único modo de eliminar el agente completamente es despoblar los lotes
afectados, puesto que las aves portadoras son una fuente constante de infección para las
nuevas aves jóvenes susceptibles que ingresan al establecimiento4. Además se
deben desinfectar los galpones e implementos y mantener las instalaciones libres de aves
durante por lo menos 2 a 3 semanas antes del ingreso de las pollas de reposición. Puesto
que la despoblación de los criaderos afectados es una medida extrema, muchas veces de
poca aplicación en la práctica, es muy recomendable prevenir estos brotes mediante la
aplicación de planes de vacunación adecuados implementados con vacunas eficaces.
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